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BNC管的生產
BNC管的生產在Bodin等人13和Hong等人16設計的兩種生物反應器中進行。簡而言之,第一個由Bodin等人描述的(縮寫為S-BNC生物反應器)通過將一根長硅膠管(外徑x壁厚:3x0.5 mm,長度14 cm)固定在玻璃管(直徑9x0.5 mm,長度13 cm)中心來組裝,用于制備S-BNC管,如圖1(A)所示。硅膠管和玻璃管之間長度為12 cm的空腔完全充滿約5 mL預培養物,長硅膠管的內腔連接一個空氣入口。第二個由Hong等人描述的(縮寫為D-BNC生物反應器)用于生產D-BNC管。D-BNC生物反應器由兩根硅膠管(直徑分別為3x0.5 mm和9x0.5 mm)組成,其中較細的管固定在較粗管的中心,如圖1(B)所示。將兩個生物反應器靜態放置在充滿氧氣(10 Pa)的容器中,在30°C下培養14天。
BNC管的純化
收獲的BNC管用超純水沖洗以去除可溶性成分,然后在80°C的1.0%(w/v)氫氧化鈉水溶液中孵育4小時以消除細菌細胞。之后,BNC管進一步用超純水洗滌以去除其他雜質,直至洗滌水的pH值為中性。然后將BNC管保存在4°C的超純水中。
溶解氧檢測
使用氧傳感器(Unisense OX-13896,丹麥)檢測溶解氧(DO)。簡而言之,將校準后的傳感器針尖浸入培養基中檢測初始DO 1分鐘,數據采集頻率為每分鐘120個數據。類似地,在培養第4天,將傳感器尖端插入生物反應器沿口徑方向的三個位置(IP:靠近內部硅膠管的位置,OP:靠近外部硅膠管或玻璃管的位置,以及MP:內外管之間的中間位置)以檢測氧濃度。選擇三個等效位置給出平均值。為了測量培養過程中培養液的DO變化,在不同時間點取樣,并在培養液快速擠出后立即進行檢測。進行三次平行測量。
細菌細胞分布表征
培養4天后,將BNC管從生物反應器中取出,并小心浸入組織最佳切割溫度(OCT)冷凍培養基(SAKURA Tissue-Tek®,USA)中20分鐘。使用冷凍切片機E儀器(Thermo Scientific,USA)制備厚度為50μm的切片標本。然后將標本轉移到孔徑為0.22μm的Nuclepore Track-Etch膜(Whatman®,Britain)上。用生理鹽水抽濾洗滌后,將標本在染色溶液(SYTO 9綠色熒光核酸染料,15μmol L-1溶于PBS,Thermo Fisher Scientific)中孵育30分鐘進行染色,未結合的染料通過PBS洗滌后真空過濾去除。使用熒光顯微鏡(Olympus BX53,Tokyo,Japan)拍攝標本的顯微照片。
糖消耗分析
為了確定BNC管培養過程中的糖消耗,每天取樣液體培養基樣品,并通過3,5-二硝基水楊酸比色法(DNS法)測定殘留的果糖或葡萄糖。測定進行三次。
BNC產量測定
BNC產量記錄每個純化管在105°C烘箱中干燥至恒重后的干重。平均值從三個樣品獲得。
BNC管形態表征
通過場發射掃描電子顯微鏡(FE-SEM,Hitachi-S4800)檢查BNC管的形態。將BNC管冷凍干燥并噴鍍碳層。FE-SEM圖像在5.0kV加速電壓下獲得。從SEM圖像中隨機選擇100根纖維,使用圖像分析軟件Image-J(NIH,USA)測量纖維直徑。然后根據獲得的數據計算平均直徑(MD)和纖維分布。
拉伸強度測量
將BNC管切成5厘米長,并在室溫超純水中保存24小時。拉伸強度測量參考了標準ISO 7198:1998(E)(已于2016年修訂)中描述的管狀樣品縱向拉伸強度測試程序。簡而言之,將BNC管在萬能材料試驗機(H5K,Hounsfield,UK)上用夾具夾住,夾距為3cm,以10mm min-1的速度和50 N傳感器負載測量軸向拉伸機械性能。拉伸測量進行三次。
爆破壓測量
使用自制設備測量爆破壓,該設備配備壓力表和注射器。將長度為4厘米的管狀樣品連接到設備上。以0.01 MPa s-1(75 mm Hg s-1)的速度將超純水注入管內直至失效。管內壓力每增加0.02 MPa保持10秒。記錄樣品突然破裂時的壓力。測量進行三次。
透水性測定
按照ISO 7198:1998(E)標準(已于2016年修訂)描述的方法測量透水性。簡而言之,記錄在0.016MPa測試壓力下,每分鐘透過BNC管(長度4厘米)管壁的水的體積。測量進行三次。
管密度測量
BNC管的密度通過將管的干重(w)除以濕管的實際體積(V)來測量:w/V[kg m-3]。為了測量實際體積,首先將管在20°C水中平衡24小時。然后將平衡后的管完全浸入放置在10mL量筒(最小刻度0.1 mL)中的5mL水中。管體積根據量筒中液位的變化獲得。干重在管于105°C干燥至恒重后測量。管密度的每個平均值從五個樣品獲得。
統計分析
進行單因素方差分析(ANOVA)以檢測收集數據的統計顯著性。P<0.05表示平均值之間存在顯著差異。
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